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| 序号 | 推送日期 | 文章 | 类型 | 简述 | 创新点 | 不足 | 研究目的 | 研究对象 | 领域 | 病种 | 技术 | 模型 | 数据类型 | 样本量 | 工程工具 | 宿主生物 | 回路设计 | 应用领域 |
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 141 | 2025-10-05 |
Microbiome catalog and dynamics of the Chinese liquor fermentation process
2025-Sep, Bioresource technology
IF:9.7Q1
DOI:10.1016/j.biortech.2025.132620
PMID:40334798
|
研究论文 | 构建了中国茅台酒发酵过程的微生物基因目录并解析其动态变化 | 建立了目前发酵食品领域最大的基因资源库MTFGC,发现20%新物种和20%新基因,首次验证地衣芽孢杆菌通过BGC合成风味物质地衣素 | NA | 解析传统食品发酵过程中的微生物组成和功能动态 | 茅台酒发酵过程中的微生物群落 | 微生物组学 | NA | 宏基因组组装,生物合成基因簇分析,基因敲除实验 | NA | 宏基因组数据 | 包含5,159个宏基因组组装基因组和8,379,551个非冗余基因 | 基因敲除 | 地衣芽孢杆菌 | 生物合成基因簇(BGC)调控的代谢通路 | 食品, 工业生物技术 |
| 142 | 2025-10-05 |
dTSR enables efficient improvement of heterologous production of spinosad in Saccharopolyspora erythraea
2025-Sep, Synthetic and systems biotechnology
IF:4.4Q1
DOI:10.1016/j.synbio.2025.02.003
PMID:40337009
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研究论文 | 开发了一种名为dTSR的双重转座和位点特异性重组方法,用于提高多杀菌素在Saccharopolyspora erythraea中的异源产量 | 首次开发dTSR方法实现细菌附着位点和两个拷贝的多杀菌素生物合成基因簇在染色体不同位置的随机整合 | 研究主要针对多杀菌素在稀有放线菌中的生产,方法在其他系统中的适用性尚未验证 | 提高多杀菌素在异源宿主中的产量 | 多杀菌素生物合成基因簇和Saccharopolyspora erythraea宿主菌 | 合成生物学 | NA | 双重转座和位点特异性重组(dTSR) | NA | 发酵产量数据 | 多轮TSR育种产生的多个工程菌株 | 位点特异性重组 | Saccharopolyspora erythraea | 多杀菌素生物合成基因簇的异源表达 | 农业 |
| 143 | 2025-10-05 |
A systematic study of regulating inorganic polyphosphates production in Saccharomyces cerevisiae
2025-Sep, Synthetic and systems biotechnology
IF:4.4Q1
DOI:10.1016/j.synbio.2025.04.004
PMID:40291979
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研究论文 | 本研究系统性地探究了酿酒酵母中无机多聚磷酸盐合成的遗传调控机制,并通过基因工程策略成功构建了高产长链多聚磷酸盐的工程菌株 | 首次系统筛选了55个单基因敲除菌株对多聚磷酸盐代谢的影响,发现协同增强多聚磷酸盐合成和链长的双突变组合,并利用CRISPR/Cas9技术构建了高产工程菌株 | 研究仅限于酿酒酵母模型,未在其他微生物系统中验证;对多聚磷酸盐的具体生物学功能机制仍需进一步研究 | 阐明酿酒酵母中多聚磷酸盐代谢的遗传调控机制,并开发高产多聚磷酸盐的工程菌株 | 酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)及其基因敲除突变株 | 合成生物学 | NA | 基因敲除筛选、CRISPR/Cas9基因编辑、qRT-PCR分析 | NA | 基因表达数据、代谢物定量数据 | 55个单基因敲除菌株库及组合突变株 | CRISPR-Cas9 | 酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae) | 多聚磷酸盐生物合成途径调控,包括增强ATP供应和抑制多聚磷酸酶活性 | 工业生物技术 |